Ведяйкин Алексей Дмитриевич, кандидат биологических наук, доцент Высшей школы биомедицинских систем и технологий, vedyajkin_ad@spbstu.ru;
Алексеев Александр Андреевич, инженер-исследователь, alekseev_aa@spbstu.ru;
Аресниев Анатолий Николаевич;
Криворучко Александр Борисович.
Актуальность исследований:
Прошедшая эпидемия, вызванная вирусом SARS-CoV-2, показала необходимость быстрого и точного тестирования заболеваний для предотвращения их бесконтрольного распространения по популяции и стала стимулом для развития новых, более быстрых и мобильных методов диагностики инфекционных болезней различной природы.
Полимеразная цепная реакция (ПЦР), широко применяемый метод, обладающий высокой чувствительностью и точностью, имеет недостатки: требует дорогостоящее оборудование и занимает много времени. В условиях срочной диагностики или перегруженных лабораторий, когда необходимо проводить сотни анализов ежедневно, важно сократить время тестирования и обеспечить мобильность процедуры, включая проведение диагностики непосредственно у пациента.
Диагностическая платформа, объединяющая быстроту тестирования, короткий период реагирования и возможность мобильного применения при низкой себестоимости компонентов, способна составить достойную конкуренцию традиционному ПЦР-анализу и эффективно выявлять некоторые важные заболевания общественного здравоохранения.
Научные результаты:
Создана полностью российская универсальная система диагностики, основанная на технологиях CRISPR-Cas и изотермического метода репликационно-прямой амплификации (РПА). Получены и выделены все необходимые белки для данной системы. Разработаны высокоэффективные методы проведения изотермической амплификации. Сейчас создаётся технология сушки всех компонентов методом лиофилизации для упрощённого хранения и транспортировки.
Созданы две версии приборов для оценки результатов тестирования:
— Первое поколение — визуальное оценивание результата;
— Второе поколение — цифровой прибор, определяющий концентрацию патогена в образце.
По итогам работы получены три патента.
Коды ГРНТИ: 76.29.43
Руководитель направления: Ходорковский Михаил Алексеевич, кандидат физико-математических наук, директор Научно-исследовательского комплекса «Нанобиотехнологии», hodork_ma@spbstu.ru, +7 (812) 552-98-09
Ведущие учёные:
Арсениев Анатолий Николаевич, инженер-исследователь Лаборатории молекулярной микробиологии, arseniev_an@spbstu.ru;
Васильева Александра Андреевна, ведущий инженер Центра коллективного пользования «Аналитический центр нано- и биотехнологий СПбПУ», avasileva@spbstu.ru;
Абрамова Марина Викторовна, инженер Центра коллективного пользования «Аналитический центр нано- и биотехнологий СПбПУ», abramova_mv@spbstu.ru.
Научные результаты:
Завершён первый этап работ по созданию панели молекулярно-генетических биомаркеров для выявления связи между полиморфизмом генов и возникновением мочекаменной болезни у пациентов с установленным диагнозом.
В 2024 году проведены исследования возможностей выявления генетического полиморфизма с применением существующих методик и технологии CRISPR/Cas. Осуществлён анализ и выбор подходящих нуклеаз Cas, разработан дизайн гидовых РНК, создана синтетическая модель ДНК, имитирующая интересующие генетические последовательности. Тестирован разработанный подход на примере одного полиморфизма с использованием синтетической модели.
В 2025 году исследование продолжается на реальных клинических образцах, полученных от пациентов клиники имени святителя Луки.
Коды ГРНТИ: 34.15.00
Руководитель направления: Морозова Наталия Евгеньевна, кандидат биологических наук, доцент Высшей школы биотехнологий и пищевых производств, morozova_ne@spbstu.ru
Алексеев Александр Андреевич, инженер-исследователь, alekseev_aa@spbstu.ru
Ведущие учёные:
Ходорковский Михаил Алексеевич, кандидат физико-математических наук, директор Научно-исследовательского комплекса «Нанобиотехнологии», hodork_ma@spbstu.ru, +7 (812) 552-98-09;
Рощектаева Виктория Дмитриевна, лаборант-исследователь Лаборатории молекулярной микробиологии, rotshekt_vd@spbstu.ru;
Ведяйкин Алексей Дмитриевич, кандидат биологических наук, доцент Высшей школы биомедицинских систем и технологий, vedyajkin_ad@spbstu.ru;
Байтин Дмитрий Михайлович.
Актуальность исследований:
SOS-ответ — процесс, запускаемый в бактериальной клетке в ответ на повреждения ДНК. Причинами таких повреждений служат, в частности, ультрафиолетовое излучение и воздействие различных антибактериальных веществ. Активация SOS-ответа приводит либо к точной репарации повреждений ДНК, либо к повышенной адаптивной способности клеток бактерий благодаря повышению уровня мутагенеза.
Белок RecA играет ключевую роль в процессе рекомбинационной репарации ДНК у бактерий. RecN принадлежит к семейству SMC-белков — группе ферментов-АТФаз, участвующих в поддержании пространственной организации хроматина. Хотя известно, что RecN вовлечён в процессы восстановления ДНК совместно с RecA, точные механизмы функционирования и роли RecN пока изучены недостаточно. Известно лишь, что RecN взаимодействует с центром репарации ДНК и усиливает АТФазную активность RecA, а RecA способствует процессу гомологической рекомбинации, инициируемой RecN.
Важность данного проекта заключается в получении новых сведений о функциональных особенностях белков RecN и RecA, что позволит расширить наши знания о механизмах поддержания стабильности генома и развитии антибиотикоустойчивости у микроорганизмов.
Научные результаты:
Проведены детальные исследования взаимодействия белка RecA вида Deinococcus radiodurans с двухцепочечными молекулами ДНК на единичном молекулярном уровне. Установлено, что при физиологическом значении рН белок RecA D. radiodurans формирует нуклеопротеиновые нити гораздо быстрее, чем аналогичная структура, сформированная белком RecA Escherichia coli. Однако нити RecA D. radiodurans отличаются большей гибкостью и меньшей длиной по сравнению с нитями RecA E. coli.
Исследовательскими работами Алексея Алексеевича Алексеева доказано существование нескольких форм активного и неактивного состояний нуклеопротеинового филамента RecA D. radiodurans на одноцепочечных участках ДНК. Показано впервые, что этот филамент способен испытывать обратимые конформационные перестройки, демонстрируя наличие устойчивых активных и неактивных конформаций.
Было выявлено, что неактивная форма филамента RecA E. coli представлена двумя разными формами, отличающимися своими физическими характеристиками и стабильностью.
Группа исследователей впервые обнаружила новое свойство белка RecX, заключающееся в стабилизации неактивных конформаций филамента RecA, что замедляет динамику перехода между активным и неактивным состоянием и увеличивает число неактивных форм в присутствии аденозинтрифосфорной кислоты (АТФ). Эти открытия легли в основу новой модели регулирования функций филамента RecA посредством специфичных конформационных взаимодействий с белком RecX, опубликованной в престижном международном журнале.
Наталией Евгеньевной Морозовой выполнен сравнительный анализ связей белка RecN с комплексами SMC, что позволило установить сходство белка RecN с ферментами семейства SMC и подтвердить экспериментально предположение о схожести механизмов работы этих белков, несмотря на существенные различия в функциях.
Коды ГРНТИ: 34.15.00
Руководитель направления: Ведяйкин Алексей Дмитриевич, кандидат биологических наук, доцент Высшей школы биомедицинских систем и технологий, vedyajkin_ad@spbstu.ru
Ведущие учёные:
Абрамова Марина Викторовна, инженер Центра коллективного пользования «Аналитический центр нано- и биотехнологий СПбПУ», abramova_mv@spbstu.ru;
Запрягаева Екатерина Юрьевна, лаборант-исследователь Лаборатории молекулярной биологии нуклеотид-связывающих белков, zapryag_eyu@spbstu.ru;
Кудрявцева Мария Андреевна, лаборант-исследователь Лаборатории молекулярной биологии нуклеотид-связывающих белков, kudryavtseva_ma@spbstu.ru;
Морозова Наталия Евгеньевна, кандидат биологических наук, доцент Высшей школы биотехнологий и пищевых производств, morozova_ne@spbstu.ru;
Румянцева Наталья Антоновна, лаборант-исследователь Лаборатории молекулярной биологии нуклеотид-связывающих белков, rumyantseva_na@spbstu.ru;
Сапожникова Антонина Павловна, лаборант-исследователь Лаборатории молекулярной биологии нуклеотид-связывающих белков, sapozhn_ap@spbstu.ru;
Хасанова Айзиля Айратовна, лаборант-исследователь Лаборатории молекулярной биологии нуклеотид-связывающих белков, hasanova_aa@spbstu.ru.
Актуальность исследований:
За последние годы установлено, что комплексы SMC способны осуществлять формирование петель из ДНК (так называемую экструзию петель), что позволяет рассматривать их как отдельный класс ДНК-транслоказ. Ключевое свойство для комплексов SMC — экструзия петель — до сих пор напрямую не продемонстрировано для комплексов SMC бактерий, в отличие от комплексов SMC эукариот. Точный механизм экструзии пока не установлен, но было предложено несколько моделей, которые требуют экспериментального подтверждения.
Для комплексов SMC, в том числе бактериальных, имеется множество вопросов, среди которых, кроме механизма экструзии петель, одним из наиболее важных вопросов является полный состав комплексов SMC, включая регуляторные белки, активирующие или ингибирующие активность комплексов. До сих пор неясно, какие именно факторы управляют работой SMC-подобных комплексов — например, обеспечивают согласование их работы с клеточным циклом, а также позволяют осуществлять параллельную работу нескольких видов комплексов SMC в одной клетке. Деление — один из главных процессов в жизни любой клетки, в том числе бактериальной. В основе деления хорошо изученных бактерий (например, Escherichia coli) лежит формирование Z-кольца, состоящего из ключевого белка деления FtsZ и нескольких других белков. Z-кольцо служит каркасом для дивисомы — комплекса белков (более 20 у E. coli), осуществляющих процесс деления. У E. coli и других бактерий главная роль белков дивисомы заключается в направленной перестройке клеточной стенки в сайте деления. За последние годы произошел значительный прогресс в понимании механизмов деления E. coli и некоторых других видов бактерий. В частности, удалось выяснить, что Z-кольцо — это неоднородная и динамичная структура, в которой тредмиллинг полимеров FtsZ способствует направленному синтезу клеточной стенки. Удалось прояснить на молекулярном уровне роль многих компонентов дивисомы, включая их взаимодействия между собой и порядок вовлечения в состав дивисомы. Дальнейшее изучение комплексов SMC и механизмов деления может способствовать созданию в будущем препаратов, направленных на блокирование этого жизненно важного процесса бактерий.
Научные результаты:
- Показано, что белок SulA ингибирует деление E. coli при соотношении FtsZ/SulA порядка 10.
- Показана способность к димеризации белков SulA E. coli и P. aeruginosa.
- Показана лидирующая роль Min-системы в регуляции процесса деления E. coli после завершения SOS-ответа.
- Визуализированы структуры, формируемые белком FtsZ в бактериальных клетках, при помощи экспансионной и локализационной микроскопии.
- Охарактеризованы межбелковые взаимодействия с участием FtsZ двух видов микоплазм — Acholeplasma laidlawii и Mycoplasma gallisepticum.
- Охарактеризованы биохимические свойства белков FtsZ видов A. laidlawii и M. gallisepticum (способность к полимеризации, ГТФазная активность), а также осуществлено их сравнение со свойствами FtsZ E. coli.
- Осуществлена визуализация структур FtsZ и некоторых других белков в живых клетках M. gallisepticum (с использованием эндогенно экспрессируемых флуоресцентных меток). Были исследованы механизмы деления U. parvum.
- Определены свойства белка SMC U. parvum.
Коды ГРНТИ: 28.23.29; 28.23.37; 34.15.27; 34.15.05
Руководитель направления: Забродская Яна Александровна, кандидат физико-математических наук, доцент Высшей школы биомедицинских систем и технологий, zabrodskaya_yaa@spbstu.ru
Ведущие учёные:
Самсонова Анастасия Александровна, кандидат физико-математических наук, ведущий научный сотрудник Научно-исследовательской лаборатории «Центр вычислительной биологии», samsonova_aa@spbstu.ru;
Чуканов Вячеслав Сергеевич, кандидат физико-математических наук, научный сотрудник Научно-исследовательской лаборатории «Лаборатория анализа биомедицинских изображений и данных», chukanov_vs@spbstu.ru;
Высочинская Вера Валерьевна, младший научный сотрудник Научно-исследовательского комплекса «Иммунобиотехнология и генная терапия», vysochinskaya_vv@spbstu.ru;
Канапин Александр Артурович.
Актуальность исследований:
В настоящее время идёт активная разработка вакцин и терапевтических препаратов на основе мРНК. Такие терапевтические препараты состоят из двух частей — непосредственно молекулы мРНК и средства её доставки. Средства доставки защищают мРНК от деградации во внутренней среде организма и позволяют мРНК проникнуть в клетки, чтобы оказывать терапевтический эффект. Создание и оптимизация состава средств доставки мРНК и оптимизация структуры самой мРНК является пока нерешённой задачей. Данный проект посвящён оптимизации структуры мРНК, что необходимо для наиболее эффективного синтеза белка, что, в свою очередь, приводит к более выраженному терапевтическому эффекту. В качестве первой задачи в создании системы синтеза РНК-вакцин полного цикла (от эпитопов до последовательности РНК вакцины) может быть создание генеративной модели, обеспечивающей конструирование регуляторных элементов, таких как UTR и IRES, от которых зависит эффективность трансляции и, как следствие, концентрация белка (антигена или терапевтического продукта). Создание такой генеративной модели предполагается на основе имеющихся в базах данных открытого доступа последовательностей таких элементов. Для оценки эффективности трансляции, управляемой регуляторными последовательностями, будут использованы открытые данные об экспрессии генов и о заполняемости рибосомами сайтов связывания в тканях различного типа.
Научные результаты:
Необходимые данные о последовательностях 5’ и 3’ регуляторных участков загружаются из базы данных UTRdb (https://utrdb.cloud.ba.infn.it/utrdb/index_107.html), содержащей около 90 тысяч последовательностей UTR человека. Элементом научной новизны выступает использование последовательностей UTR вирусов, информация о которых будет получена из базы данных ViruSurf (http://gmql.eu/virusurf/), включающей данные о нескольких десятках тысяч вирусов человека и животных. Информация об уровнях экспрессии генов в различных тканях косвенным образом может быть извлечена из данных высокопроизводительного секвенирования РНК (RNASeq). Сырые данные секвенирования доступны в репозитории SRA (Sequence Read Archive, https://www.ncbi.nlm.nih.gov/sra). Первой задачей будет единообразная обработка скачанных из репозитория сырых данных.
Итоговая таблица будет включать следующую информацию:
- последовательности 3’ и/или 5’ UTR;
- тип клеток (при наличии информации); - значение уровня экспрессии соответствующего гена.
В качестве основы для модели предполагается использовать модификацию опубликованной ранее UTR-LM (https://github.com/a96123155/UTR-LM).